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    • 细胞生物学层次化实验指导(第3版科学出版社十四五普通高等教育本科规划教材)
      • 作者:编者:薛雅蓉//张晶//华子春|责编:王玉时
      • 出版社:科学
      • ISBN:9787030814531
      • 出版日期:2025/03/01
      • 页数:212
    • 售价:23.92
  • 内容大纲

        本教材包含6章内容及附录,6章分别是细胞生物学研究方法概述、细胞生物学诺贝尔奖研究发现之旅、细胞生物学先进仪器设备、基础性实验、综合性实验和探究性实验:附录包括常用溶液配制方法、细胞生物学实验教学方法案例等内容。数字资源包括部分难点实验操作和先进仪器使用视频、部分实验结果图片等,可扫描二维码查阅。高校授课教师可申请教学课件。
        本教材实验项目共69个,按难度、耗时、条件需求等进行了分类,兼具适应性、高阶性和挑战度,适合作为高校生命科学相关专业本科生及研究生的细胞生物学实验教材,能够满足多样化的人才培养需求。
  • 作者介绍

  • 目录

    第三版前言
    第一章  细胞生物学研究方法概述
      第一节  细胞制片方法
      第二节  细胞化学技术
      第三节  细胞获取与分离方法
      第四节  细胞工程技术
      第五节  基因编辑技术
      第六节  单细胞测序技术
      第七节  细胞代谢组学分析方法
      第八节  细胞能量代谢分析
      第九节  活细胞成像技术
    第二章  细胞生物学诺贝尔奖研究发现之旅
      第一节  细胞感知和适应氧变化机制发现之旅
      第二节  T细胞表面的免疫负调节分子发现之旅
      第三节  细胞自噬机制发现之旅
      第四节  构成大脑定位系统的细胞发现之旅
      第五节  细胞囊泡运输系统及其调控机制发现之旅
      第六节  细胞重编程及诱导性多能干细胞发现之旅
      第七节  染色体端粒及端粒酶对染色体的保护机制发现之旅
      第八节  器官发育和程序性细胞死亡的基因调节发现之旅
      第九节  蛋白质地址签的发现之旅
      第十节  G蛋白及其在细胞中的信号转导作用发现之旅
      第十一节  蛋白质可逆磷酸化作用的生物调节机制发现之旅
    第三章  细胞生物学先进仪器设备
      第一节  细胞观察及形态分析设备
      第二节  细胞分选设备
      第三节  细胞制片设备
      第四节  细胞破碎设备
      第五节  细胞活力检测设备
    第四章  基础性实验
      第一节  细胞制片及染色观察
        实验1  血细胞涂片的制备及染色观察
        实验2  植物叶片组织徒手切片的制备及观察
        实验3  动物组织冰冻切片的制备及染色观察
      第二节  细胞获取与分离
        实验4  研磨低渗法分离小鼠脾脏单个核细胞
        实验5  酶解法制备植物原生质体
        实验6  密度梯度离心法分离外周血单个核细胞
        实验7  小鼠腹腔巨噬细胞的富集与分离
      第三节  细胞器和细胞组分显示
        实验8  植物细胞线粒体和液泡的超活染色及观察
        实验9  酸性磷酸酶法显示巨噬细胞溶酶体
        实验10  牛蛙胸骨剑突软骨细胞高尔基体的中性红染色
        实验11  细胞中过氧化物酶体的显示
        实验12  细胞中多糖和游离脂的显示
        实验13  经典细胞化学法显示细胞DNA和RNA
        实验14  考马斯亮蓝染色法显示细胞骨架
      第四节  细胞大小测量与细胞计数
        实验15  细胞大小的显微测量
        实验16  细胞计数

      第五节  细胞生理
        实验17  哺乳动物红细胞膜的通透性检测
        实验18  植物细胞质壁分离现象观察及质壁分离法测定基态渗透势
        实验19  小鼠腹腔巨噬细胞吞噬现象观察及吞噬活性检测
        实验20  细胞运动观察实验
        实验21  台盼蓝染色法鉴别死活细胞
      第六节  细胞分裂
        实验22  压片法制备植物细胞分裂标本及显微观察
        实验23  花粉母细胞减数分裂标本制备
        实验24  滴片法制备悬浮细胞分裂标本
        实验25  去壁低渗法制备植物细胞染色体分散标本
      第七节  细胞裂解及效果检测
        实验26  小鼠腹水瘤细胞裂解及乳酸脱氢酶活性检测
      第八节  细胞器分离
        实验27  植物细胞叶绿体的分离
        实验28  动物细胞线粒体的分离
        实验29  胞外囊泡提取
    第五章    综合性实验
      第一节  细胞分选
        实验30  免疫磁珠分选法分离小鼠脾脏CD4+T淋巴细胞
        实验31  T细胞的免疫荧光标记及流式细胞仪分选实验
      第二节  细胞培养与细胞融合
        实验32  贴壁细胞的原代培养实验
        实验33  贴壁细胞的传代培养实验
        实验34  小鼠骨髓单个核细胞集落形成实验
        实验35  PEG介导的细胞融合实验
      第三节  细胞冻存与复苏
        实验36  细胞冻存与解冻复苏实验
      第四节  细胞增殖与活力检测
        实验37  MTT比色法检测细胞增殖与活力
        实验38  CCK8法检测细胞增殖与活力
        实验39  ATP生物荧光法检测羟基喜树碱对腹水瘤细胞活力的影响
      第五节  免疫细胞化学
        实验40  免疫荧光法显示细胞骨架
        实验41  酶免疫细胞化学法显示小鼠脾脏淋巴细胞
      第六节  细胞黏附与迁移分析实验
        实验42  肿瘤细胞黏附能力分析实验
        实验43  检测肿瘤细胞侵袭能力的Transwell小室实验
        实验44  肿瘤细胞迁移的划痕实验
      第七节  细胞的激活及信号转导分子检测
        实验45  利用钙离子荧光探针检测细胞内Ca2+浓度
        实验46  信号蛋白磷酸化水平检测实验
        实验47  转录因子NF-κB活性检测实验
      第八节  哺乳动物细胞转基因及表达检测
        实验48  绿色荧光蛋白基因转染体外培养的小鼠成纤维细胞及表达检测
      第九节  细胞周期调控与检测
        实验49  利用流式细胞术分析细胞周期时相
        实验50  细胞周期蛋白D1基因转染细胞及细胞周期检测
        实验51  胸腺嘧啶脱氧核苷(TdR)双阻断法同步化培养的动物细胞
        实验52  秋水仙胺阻抑法分离贴壁培养的哺乳动物M期细胞

        实验53  植物细胞中期同步化诱导
      第十节  分裂细胞微核的诱导与检测(细胞遗传毒性)
        实验54  蚕豆根尖细胞微核的诱导与检测
        实验55  小鼠骨髓多染性红细胞的诱导与检测
        实验56  小鼠精巢细胞微核的诱导与检测
        第六章    探究性实验
      第一节  肿瘤细胞诱导凋亡及检测
        实验57  涂片染色法检测凋亡细胞
        实验58  利用激光共聚焦显微镜及流式细胞仪检测Annexin V-FITC/PI染色的凋亡细胞
        实验59  凋亡细胞DNA的梯状条带电泳
        实验60  TUNEL技术原位检测显示凋亡实体瘤细胞
      第二节  细胞自噬的诱导及检测
        实验61  MDC染色法检测饥饿法诱导自噬的巨噬细胞
        实验62  GFP-LC3基因转染法显示无血清饥饿法诱导形成的自噬体
      第三节  细胞衰老的诱导与检测
        实验63  H2O2诱导细胞衰老及胞内衰老相关的β-半乳糖苷酶检测
        实验64  衰老细胞ROS的流式细胞仪检测
      第四节  细胞分化的诱导及检测
        实验65  骨髓造血干细胞的诱导分化实验
        实验66  维甲酸诱导肿瘤细胞分化及检测实验
      第五节  基因沉默与编辑
        实验67  RNA干扰沉默绿色荧光蛋白基因
        实验68  CRISPR-Cas9技术定向敲除哺乳动物细胞基因
      第六节  细胞端粒酶活性检测实验
        实验69  肿附录
    附录一  常用溶液配制方法
    附录二  腹水瘤小鼠模型建立方法
    附录三  细胞培养前的准备工作
    附录四  细胞生物学实验教学方法案例

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